EpiTect Hi-C Kit

クロマチン構造の高分解能マッピング、ゲノム配列の高品質アセンブリー、ハプロタイプフェージングおよび染色体再配列の同定用。

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EpiTect Hi-C Kit (6)

Cat. No. / ID:   59971

Hi-Cは全ゲノム規模でクロマチン相互作用を捉える近接ライゲーションアッセイです。構造変異体*、染色体再配列とコピー数多型、染色体コピー数、サイズとセントロメアの位置の同定とエピジェネティック解析に使用できます。
A$3,520.00
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EpiTect Hi-C Kitは分子生物学的アプリケーション用であり、疾病の診断、予防、あるいは治療に使用することはできません。

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特徴

  • オールインクルーシブキット – Hi-C NGSライブラリー作成のための品質管理された試薬
  • マルチプレックスシークエンシング用の配列バーコードを備えたIlluminaアダプターが付属
  • 十分にテストされた堅牢かつ迅速なプロトコール – Hi-Cライブラリーを2日かけることなく生成
  • 低サンプルインプット要件 – わずか5000の細胞からライブラリーを生成
  • オープンソースツールに基づくデータ分析パイプライン

製品詳細

Hi-Cはもともと、ゲノムワイドな染色体構造検出のための強力な技術として考案され、kbの分解能でクロマチン構造の特性解析を可能にしました。しかし、この技術は他にも重要なアプリケーションがあります。たとえば、Hi-Cは、既知の参照ゲノムを持たない生物から、少数の非常に長いスキャフォールドを持つ連続性の高いゲノムアセンブリーを作成するために使用されます。さらに、Hi-Cはハプロタイプフェージングや染色体再配列の検出にも非常に有用です。

EpiTect Hi-C Kitは、低細胞インプット要件の、堅牢かつシンプルで迅速なプロトコールを提供し、クロスリンクされた細胞から高品質のHi-C Illumina NGSライブラリーを2日かけずに作成することができます。

パフォーマンス

EpiTect Hi-C Kitは高品質のHi-C NGSライブラリーを作成することができることによって、コストのかかるダウンストリームのディープシークエンシングを行うことなく最高品質のデータを確実に生成します。40を超えるEpiTect Hi-Cライブラリーのシークエンシング結果を分析し、キットの性能を評価しました。最も重要なQCメトリクスを Hi-Cイベントの割合(%) 長距離シス相互作用の割合(%) シス/トランス比 鎖配向バイアスのないEpiTect Hi-C Kit、および 単一の制限フラグメント由来のペアリードの割合(%)の図に示します。データは、EpiTect Hi-C Kitが、平均してHi-C実験の成功に通常十分と考えられる基準をはるかに上回るNGSライブラリを生成することを示しています。

図参照

原理

Hi-Cは、ゲノムワイド規模でクロマチン相互作用を捉える近接ライゲーションアッセイです。EpiTect Hi-C Kitでは、特殊なDNA調製により、Illuminaに対応するNGSライブラリが得られます(図 EpiTect Hi-C ワークフロー – 1日目および EpiTect Hi-Cワークフロー – 2日目参照)。簡単に説明しますと、このアッセイは、DNA結合タンパク質とDNAの化学的クロスリンクによってクロマチンコンフォメーションが固定されている核の精製から始まります。次に、DNAは、4bpの制限酵素で完全に消化されます。開いたDNA末端をビオチンで標識し、その後ライゲーションを行います。Hi-Cライゲーション産物のペアエンドシークエンシングにより、空間的に密接に関連しているDNA鎖に由来する非常に多くのキメラ配列を特定します。2つの配列が一緒にライゲーションされる確率は、空間における両者の平均距離の関数です。ライゲーションジャンクションを定量化すると、DNA接触頻度を決定することができ、そこからクロマチン構造の高分解能マッピングを行うことができます。

図参照

操作手順

EpiTect Hi-Cワークフロー(図 EpiTect Hi-Cワークフロー – 1日目 EpiTect Hi-Cワークフロー – 2日目参照)は、公開されているプロトコールに比べ、大幅に改善されています。1週間かかる複雑な手順が、わずか1.5日で完了するシンプルで堅牢なプロトコールに変わりました。さらに、サンプルインプット要件は1桁減少し、わずか5000個の細胞からHi-C NGSライブラリを作成できます。このプロトコールは、哺乳類細胞培養からサンプリングしたクロスリンクされた細胞を基に開発されました。

EpiTect Hi-C手順は、in situ (核内) Hi-C法のひとつのバージョンで、核を穏やかに精製し、透過処理を行います。最初の消化とライゲーションステップにおいても、ゲノムの空間的構成を維持します。このプロセスは、ゲノムの構成を反映しない、情報価値のないライゲーションイベントによるバックグラウンドノイズを最小限に抑えるために不可欠です。これは、インタクトな核が架橋複合体の動きやランダムな衝突を抑制し、ライゲーションイベントが主に位相的に関連するDNA断片間で発生するからです。

Hi-C NGSライブラリの構築

EpiTect Hi-C Kitのワークフローは2つの部分で構成されており、それぞれ1日で完了します。プロトコールの手順を以下の表にまとめ、図 EpiTect Hi-C ワークフロー – 1日目 EpiTect Hi-Cワークフロー – 2日目で可視化します。付属のIlluminaアダプターには配列バーコードがあり、最大6つのサンプルのマルチプレックスシークエンシングが可能です。

全体のプロトコールをご覧になるには、当社の詳細なEpiTect Hi-Cハンドブックをご覧ください。

データ分析

Hi-Cデータ分析は、当社のGeneGlobeデータ分析センターより提供しています。Hi-Cシークエンシング結果は、EpiTect Hi-C Data Analysis Portalを使用して分析できます。このポータルはオープンソースツールを使用し、QCシークエンシングレポート、Hi-Cコンタクトマトリックス、クロマチンコンタクトマップを可視化します。詳細については、当社のEpiTect Hi-Cデータ分析ポータルユーザーガイドをご覧ください。

図参照

アプリケーション

クロマチン構造

Hi-Cは、核組織分析のための非常に重要なツールになりました。Hi-Cデータの分析により、ゲノムの構造が驚くほど複雑であることが明らかになりました。解像度を上げると、ゲノムを染色体テリトリー、染色体サブコンパートメント、トポロジー関連ドメイン(TADs)、DNAループに分割できる多層構造になっていることがわかります(図 クロマチン構造のレベル参照)。さらに、ゲノムの構造はダイナミックで、発生過程で変化します。染色体が同じように折り畳まれている細胞タイプは2つとありません。

染色体再配列とコピー数多型

個々の染色体は物理的に個別のテリトリーに分かれているため、Hi-Cが捉えるDNA相互作用は、主として同じ染色体のDNA間(シス)で起こり、染色体間(トランス)ではほとんど起こりません。この現象により、Hi-Cは転座やその他の対象構造変異を特定するためのゲノムワイドアッセイとして使用できます。他のNGS技術と比較して、Hi-Cは非常に低いカバレッジしか必要としないため、コストを節約できます。さらに、マッピングが不十分な領域が関与する再配列は、標準的なNGS法よりもHi-Cを用いた方が検出しやすくなります。便利なことに、同じHi-Cデータを用いてコピー数の変化を検出できます。

ゲノムアセンブリ – ハプロタイプフェージング

新しい種のゲノムのシークエンシングやアセンブリを行うとき、配列スキャフォールドの作成は、シークエンシング範囲を超える長い反復配列によって制限されることがよくあります。Hi-Cデータでは、相互作用の大部分が同じ染色体上の遺伝子座間のシスで生じます。さらに、このシス相互作用の大部分は長距離であり、数百万ものDNA塩基によって隔てられた遺伝子座間で生じます。このようなクロマチン相互作用の特性を利用することで、参照ゲノムを必要とせずに、配列スキャフォールドを順序付け、方向付け、結合して、ほぼ全長の染色体にすることができます。同じ原理を用いて、Hi-C相互作用マップを使用し、遺伝子変異を父方および母方の姉妹染色体に割り当てることによって、二倍体ゲノムを作成できます(図  Hi-Cシークエンシングデータのダウンストリームアプリケーション参照)。

図参照

裏付けデータと数値

リソース

クイックスタートプロトコール (2)
ソフトウェアユーザーガイド (2)
キットハンドブック (1)
EpiTect Hi-C Handbook
PDF (499KB)
Safety Data Sheets (1)
Certificates of Analysis (1)

FAQ

Does QIAGEN provide data analysis to accompany the EpiTect Hi-C Kit?
Yes. Visit QIAGEN’s online GeneGlobe Data Analysis Center at https://ngsdataanalysis2.qiagen.com/HiC/analysisfile to analyze your data with the EpiTect Hi-C Data Analysis Portal.
FAQ ID - 143075
How many reactions are in a kit?
Each EpiTect Hi-C Kit comes with enough reagents for 6 samples. One sample is typically sufficient for the generation of ~300–600 million raw read-pairs.
FAQ ID - 143067
Are there stopping points in the Hi-C workflow?
Yes. Following the Hi-C Digestion, Hi-C End Labeling, Hi-C Ligation, or Chromatin De-crosslinking steps in the Hi-C Part 1 workflow, users can store samples at −15 to −25°C and resume with the procedure at a later date.
FAQ ID - 143071
What kind of analysis does the EpiTect Hi-C Data Analysis Portal perform?
Raw sequencing reads are processed to generate a sequencing report and Hi-C contact matrices. Upon completion of the data analysis, an installation of HiGlass within GeneGlobe can be used to visualize and interact with the generated contact matrices. For further information, refer to the user guide found at the EpiTect Hi-C Data Analysis Portal.
FAQ ID - 143076
Can I substitute the endonuclease used in the Hi-C Digestion step with another endonuclease?
No. The EpiTect Hi-C Digestion Enzyme and Digestion Buffer have been developed to work together to provide optimal results.
FAQ ID - 143070
Can I use cells that have been previously crosslinked and frozen (e.g., for a ChIP or ChIP-seq experiment) as input material for the EpiTect Hi-C protocol?
Yes. However, the cells should have been crosslinked with 1% formaldehyde and not have been frozen for longer than 6 months.
FAQ ID - 143069
With which platform can I perform my sequencing?
EpiTect Hi-C sequencing libraries are compatible with all Illumina sequencing platforms.
FAQ ID - 143072
Can I use my own pipeline to analyze results from my EpiTect Hi-C experiments?
Yes. For your analysis, you will need the following additional information. The endonuclease used in the EpiTect Hi-C kit cuts at GATC sites. The Hi-C junction motifs (or tags) generated after Hi-C ligation consist of a GATCGATC sequence.
FAQ ID - 143078
With which read length should the EpiTect Hi-C NGS libraries be sequenced
Read lengths of 36–150 bp can be used to sequence the EpiTect Hi-C libraries on Illumina sequencers. However, as mappability increases with read length, we suggest the use of 2 x 150 bp sequencing reads for best results.
FAQ ID - 143073
Does the EpiTect Hi-C Data Analysis Portal cost money?
No. EpiTect Hi-C Kit customers may analyze their Hi-C sequencing results with the Data Analysis Portal (https://ngsdataanalysis2.qiagen.com/HiC/analysisfile) at no charge.
FAQ ID - 143077
How can I accurately determine the amount of input material for the EpiTect Hi-C Kit?
An automated cell counter or hemocytometer should be used to assist in distributing the correct amount of cells to each sample.
FAQ ID - 143065
What sample source do you support?
In principle the EpiTect Hi-C protocol should work for any type of crosslinked eukaryote cells; but so far, it has only been experimentally validated with cultured human and mouse cells. Bacteria and archaea are not supported.
FAQ ID - 143066
What is the effect of using amounts of input material per sample that fall outside the recommended range?
Using input amounts outside the range of 5 x 103 and 2.5 x 106 human or mouse cells (or the equivalent of 30 ng–15 µg DNA) per sample risks affecting the quality of the resulting NGS library, such that it is likely to have higher levels of inward-facing (FR) sequence read bias, unligated ends, and read pairs containing contiguous, religated restriction fragments.
FAQ ID - 143064 
What is the required amount of input material per sample for the EpiTect Hi-C Kit?
The EpiTect Hi-C protocol has been optimized for the use of 5 x 105 human or mouse cells (or the equivalent of 3 µg of DNA) per sample. Input amounts between 5 x 103 and 2.5 x 106 human or mouse cells (or the equivalent of 30 ng–15 µg DNA) per replicate may also be used.
FAQ ID - 143063
How long does it take to complete the EpiTect Hi-C protocol?
From crosslinked sample to purified Illumina NGS library, the EpiTect Hi-C protocol takes 1.5–2 days to complete.
FAQ ID - 143068
How do I know if my Hi-C sample is a good candidate for deep sequencing?
Prior to costly deep sequencing, users are advised to sequence Hi-C NGS libraries at low depth (<1 million reads) for quality control purposes. Low-depth sequencing data can be processed with the EpiTect Hi-C Data Analysis portal at www.qiagen.com/DataAnalysisCenter, and the sequencing report can be used to assess the quality of Hi-C libraries.
FAQ ID - 143074