dPCR Microbial DNA Detection Assays

Pour la détection par PCR numérique des cibles microbiennes, y compris les gènes de résistance bactérienne, fongique, parasitaire, virale, aux antibiotiques ou du facteur de virulence

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dPCR Microbial DNA Detection Assays

Cat. No. / ID:   250207

Un tube avec dosage lyophilisé, colorant (fluorophore) configurable, 200 réactions (40 µl de réaction en nanoplaque 26k)
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Product Type
Predesigned assay
In silico designed custom assay
Les dPCR Microbial DNA Detection Assays sont destinés aux applications de biologie moléculaire. Ces produits ne sont pas conçus pour le diagnostic, la prévention ou le traitement des maladies.

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Caractéristiques

  • Dosages prédéfinis pour la détection d’espèces microbiennes, de gènes de virulence ou de gènes de résistance aux antibiotiques
  • Dosages pour plus de 700 cibles
  • Outil de conception de dosage personnalisé pour cibles bactériennes, fongiques ou virales disponibles sur GeneGlobe
  • La sélection du colorant permet de multiplexer jusqu’à 5 cibles par réaction
  • Méthode de dPCR simple et rapide sur le QIAcuity
  • Combiner l’ADN microbien et l’ARN viral cibles dans une réaction avec le QIAcuity OneStep Advanced Probe Kit

Détails produit

L’identification microbienne et le profilage sont intéressants dans de nombreux domaines y compris la santé humaine, l’alimentation, le test de l’alimentation et le test environnemental. L’identification microbienne détermine la présence ou l’absence d’un microbe dans un échantillon, alors que le profilage microbien détermine son expression relative dans deux conditions expérimentales ou plus, nécessitant ainsi un échantillon de référence et un normalisateur.

Nos dPCR Microbial DNA Detection Assays ciblent les gènes de résistance bactérienne, fongique, parasitaire, virale, aux antibiotiques ou du facteur de virulence. Pour les bactéries, les dosages ciblent le gène ARNr 16S et pour les champignons, ils ciblent les gènes de l’ARN ribosomal. Le portefeuille comprend plus de 700 dosages différents, dont 200 sont testés par dPCR en laboratoire humide. Pour les cibles non couvertes par notre portefeuille de dosages microbiens par dPCR prédéfinis, nous offrons un outil de conception de dosage personnalisé facile à utiliser pour les cibles bactériennes, fongiques et virales.

Chaque dosage est constitué d’une paire d’amorces et d’une sonde d’hydrolyse avec un colorant fluorophore configurable. Les fluorophores disponibles sont FAM, HEX, ROX, TAMRA et Cy5, qui peuvent être mélangés et associés pour prendre en charge l’analyse de jusqu’à cinq cibles différentes dans une réaction dPCR multiplex. Nous proposons aussi des lots de dosages dPCR 5-plex testés en laboratoire humide pour analyser les cibles courantes ; voir Applications ci-dessous pour plus de détails. Pour la réaction dPCR, le dosage est combiné avec le QIAcuity Probe PCR Kit (ADN cibles) ou le QIAcuity OneStep Advanced Probe Kit (ARN cibles).

Le dosage fonctionne conjointement avec le QIAcuity Digital PCR System et les QIAcuity Nanoplates.

Souhaitez-vous en savoir plus sur ce produit et être contacté par l’un de nos spécialistes de la dPCR ? Inscrivez-vous ici, et nous vous contacterons très prochainement.

Performances

Détection exacte et précise

Les dPCR Microbial DNA Detection Assays et le QIAcuity dPCR System permettent une quantification basée sur la PCR numérique précise. L’analyse du matériel de référence NIST a montré la concentration prévue de matrice d’entrée. Voir la figure Quantification de l’étalon de référence NIST 8376 avec l’ADNg de Shigella sonnei pour plus de détails.

Performance en multiplex

La détection des cibles microbiennes basée sur la dPCR multiplex offre une configuration flexible de petits panels en moins de réactions, ce qui préserve des échantillons précieux. Le multiplexage améliore aussi le rendement d’analyse, car il requiert moins de puits de nanoplaques et augmente le nombre d’échantillons pouvant être analysés dans chaque cycle d’exécution. Nos dPCR Microbial DNA Detection Assays peuvent être combinés pour l’analyse multiplex.

Vous pouvez combiner vos propres dosages pour le multiplexage en commandant des dosages individuels avec des colorants différents (FAM, HEX, TAMRA, ROX ou Cy5). Vous pouvez aussi choisir parmi notre offre de lots de dosages 5-plex, qui ont déjà été testés en laboratoire humide en dPCR par nos scientifiques. D’autres combinaisons des plus de 700 dosages prédéfinis doivent être vérifiés par votre propre laboratoire.

Une comparaison entre l’analyse simplex et multiplex avec les dPCR Microbial DNA Detection Assays indique une quantification similaire et hautement précise pour toutes les cibles (voir figure Détection microbienne dans la dPCR multiplex sur QIAcuity). Outre une quantification précise des cibles, un cycle d’exécution de dPCR 5-plex montre également une détection hautement spécifique de différents agents pathogènes microbiens d’origine hydrique (voir la figure Détection d’agents pathogènes microbiens d’origine hydrique en 5-plex sur QIAcuity).

Principe

Les Microbial DNA Detection Assays prédéfinis et les Custom dPCR Microbial Assays sont conçus pour être utilisés dans la PCR numérique de nanoplaque. Chaque dosage est basé sur une amplification PCR en point final d’une région génétique spécifique de l’espèce du microbe concerné ou une région d’un gène microbien individuel. Le produit amplifié est détecté avec des sondes d’hydrolyse fluorescente spécifiques à la cible, ce qui améliore la spécificité du dosage.

Conçus pour la détection des espèces bactériennes, les dPCR Microbial DNA Detection Assays ciblent les gènes de l’ARN ribosomal principalement le gène de l’ARN ribosomal 16S et ont été conçus à l’aide de la base de données GreenGenes pour les séquences 16S et les séquences d’ADN de souche type déposées chez NCBI. Les dosages pour les espèces fongiques, virales et de métazoaires ciblent différentes régions génétiques spécifiques à la cible, y compris les gènes de l’ARN ribosomal et d’autres gènes marqueurs individuels, chacun étant déposé chez NCBI. Différentes bases de données ont été utilisées pour la conception des dosages des gènes de résistance aux antibiotiques (par ex. lahey.org, ARDB, etc.) et des gènes du facteur de virulence (par ex. VFDB).

Les Custom dPCR Microbial Assays sont créés avec notre logiciel de conception de dosage personnalisé qui est basé sur un algorithme sophistiqué et minutieusement testé, développé spécifiquement pour les cibles microbiennes. Celui-ci garantit que chaque conception de dosage répond à des critères de performance rigoureux pour offrir des dosages robustes et de haute qualité avec une sensibilité et une spécificité optimales.

Vous trouverez ici une description du principe de la réaction de dPCR sur nanoplaque.

Procédure

Le protocole du dPCR Microbial DNA Detection Assay est des Custom dPCR Microbial Assays est simple et peut être effectué dans tout laboratoire avec l’instrument QIAcuity dPCR. L’ADN est isolé de l’échantillon et ajouté dans le QIAcuity Probe Mastermix prêt à l’emploi et l’eau exempte d’ADN microbien (eau UCP). Ce mélange est aliquoté dans chaque puits de la pré-plaque de dPCR, qui contient des jeux pré-ajoutés d’amorces et de sondes d’hydrolyse. Les mélanges réactionnels sont transférés de la pré-plaque au puits d’une nanoplaque dPCR, qui est ensuite scellée et transférée dans l’instrument dPCR QIAcuity (voir la figure Une méthode sur plaques simple et rapide). Les étapes de partitionnement, de cyclage et d’imagerie sont entièrement automatisées par l’instrument dPCR QIAcuity selon les paramètres préréglés. En fonction du protocole de cyclage, les résultats du cycle d’exécution de dPCR peuvent être analysés dans la suite QIAcuity Software Suite après ~2 heures (voir figure dPCR microbienne en 2 heures environ avec un temps de manipulation minimal).

Applications

Les dPCR Microbial DNA Detection Assays conviennent parfaitement à la détection des gènes de résistance aux espèces bactériennes, fongiques et virales et aux antibiotiques microbiens ou du facteur de virulence. Différents échantillons peuvent être analysés, y compris des selles, crachats, écouvillons vaginaux, eaux usées et autres.

De plus, l’outil de conception Custom dPCR Microbial Assays permet de concevoir de façon transparente des dosages pour toutes les cibles microbiennes d’intérêt (bactéries, champignons, virus) non couvertes par nos dPCR Microbial DNA Detection Assays prédéfinis.

Lots 5-plex testés par dPCR en laboratoire humide

ID du lot Champ d’application Numéros de référence
du dosage et
fluorophore*
Cibles (ID de taxonomie NCBI)
WW-001 Eaux usées 1 DMA00278-F
DMA00291-R
DMA00340-H
DMA00192-T
DMA00344-C
Pseudomonas aeruginosa (287)
Salmonella enterica (28901)
Vibrio cholerae (666)
Legionella pneumophila (446)
Yersinia enterocolitica (630)
WW-002 Eaux usées 2 DMA00340-H
DMA00344-R
DMA00199-C
DMA00192-T
DMA00710-F
Vibrio cholerae (666)
Yersinia enterocolitica (630)
Listeria monocytogenes (1639)
Legionella pneumophila (446)
Coronavirus humain SARS-CoV-2 (2697049)
WW-003 Eaux usées 3 DMA00109-F
DMA00192-H
DMA00340-T
DMA00194-R
DMA00344-C
Clostridium perfringens (1502)
Legionella pneumophila (446)
Vibrio cholerae (666)
Leptospira alexanderi (100053)
Yersinia enterocolitica (630)
HM-001 Microbiome humain 1 DMA00148-F
DMA00143-T
DMA00024-R
DMA00003-C
DMA00150-H
Faecalibacterium prausnitzii (853)
Eubacterium rectale (39491)
Akkermansia muciniphila (239935)
Acidaminococcus fermentans (951)
Finegoldia magna (1260)
PB-001 Probiotiques 1 DMA00177-F
DMA00185-T
DMA00061-C
DMA00137-R
DMA00320-H
Lactobacillus acidophilus (1579)
Lactiplantibacillus plantarum (1590)
Bifidobacterium bifidum (1681)
Enterococcus faecium (1352)
Streptococcus salivarius (1304)
RG-001 Gènes de résistance 1 DMA00566-F
DMA00542-H
DMA00576-T
DMA00574-R
DMA00575-C
Gène de résistance au fluoroquinolone QnrS
Groupe bêta-lactamase classe D OXA-10
Gène de résistance à la vancomycine vanB
Gène tetA de la pompe à efflux de la tétracycline
Gène tetB de la pompe à efflux de la tétracycline
RG-002 Gènes de résistance 2 DMA00557-T
DMA00528-R
DMA00548-F
DMA00587-H
DMA00553-C
Gène QepA de résistance à la fluoroquinolone
Groupe beta-lactamase blaVIM-1 classe B
Groupe beta-lactamase OXA-48 classe D
Gène sul1 de résistance au sulfonamide (43904)
Groupe beta-lactamase OXA-58 classe D
VG-001 Gènes de virulence 1 DMA00614-F
DMA00635-T
DMA00677-H
DMA00680-R
DMA00597-C
Sous-unité fimbriale mineure (fimH)
Gamma-hémolysine composant B (hlgB)
Toxine 1 produisant des shigatoxines sous-unité B encodée dans le prophage CP-933V
Toxine produisant des shigatoxines sous-unité B ; sous-unité de liaison des récepteurs
Entérotoxine du choléra accessoire (ace)
CP-001 Production de cannabis 1 DMA00278-F
DMA00302-H
DMA00365-R
DMA00199-C
Pseudomonas aeruginosa (287)
Staphylococcus aureus (1280)
Aspergillus niger (5061)
Listeria monocytogenes (1639)
HM-002 Microbiome humain 2 DMA00271-F
DMA00017-T
DMA00049-C
DMA00142-H
DMA00317-R
Prevotella oralis (28134)
Actinomyces viscosus (1656)
Bacteroides fragilis (817)
Eubacterium infirmum (56774)
Streptococcus oralis (1303)
RG-003 Gènes de résistance 3 DMA00579-F
DMA00577-T
DMA00573-R
DMA00502-H
DMA00559-C
aac(6’)-Ib
vanC
oprm
Groupe QnrB-1
Groupe CTX-M-1
VG-002 Gènes de virulence 2 DMA00664-F
DMA00677-H
DMA00678-T
DMA00642-R
DMA00680-C
ply
stx1B
stx2A
invA
stxB
VG-003 Gènes de virulence 3 DMA00688-F
DMA00668-H
DMA00596-T
DMA00597-R
DMA00611-C
wbkA
ptxA
ace (E. faecalis)
ace (V. cholerae)
efaA

* F : FAM, H : HEX, T : TAMRA, R : ROX ou C : Cy5

Données et illustrations utiles

Ressources

Technical Information (1)
Detect microbial targets – bacterial, fungal, parasitic, viral, antibiotic resistance and virulence factor genes – using digital PCR
Kit Handbooks (1)
Brochures & Guides (2)
Detect microbial targets – bacterial, fungal, parasitic, viral, antibiotic resistance and virulence factor genes – using digital PCR
A versatile workflow for the detection of low-abundance microbes
Safety Data Sheets (1)
Certificates of Analysis (1)

FAQ

Are the Custom dPCR Microbial Assays wet lab tested?
No. While the Custom dPCR Microbial Assays are designed in silico using stringent criteria to ensure optimal performance, the resulting assay designs are not subsequently wet lab tested.
FAQ ID - 4065
In which channels can I detect custom designed dPCR Microbial assays?
Custom designed dPCR Microbial assays can be ordered for detection in the Green, Yellow, Orange, Red, and Crimson channels on the QIAcuity.
FAQ ID - 4066
With which restriction enzymes are the Custom dPCR Microbial assays compatible?
The restriction enzymes compatible with each specific custom assay design are listed in the Product Sheet.
FAQ ID - 4067
Are the cycling conditions for Custom dPCR Microbial assays the same as for the pre-designed dPCR Microbial DNA Detection assays?
Yes. All QIAcuity dPCR Microbial DNA Detection Assays and Custom dPCR Microbial have the same recommended cycling conditions.
FAQ ID - 4068
Can the custom assay design tool be used to order custom Microbial assays for use with intercalating dye-based chemistry?
No. The custom assay design tool can only be used to create hydrolysis probe-based dPCR Microbial assays.
FAQ ID - 4069
Can I use the custom assay design tool to start multiple designs at once?
No, a batch design function is not implemented. Only one design request at a time can be submitted.
FAQ ID - 4070
I submitted a custom assay design >24h ago and did not receive a design. What is the reason?
Depending on the submitted target the algorithm can take up to 48 hours to complete the design. The majority of designs should take less than 1 day.
FAQ ID - 4071
Can I design multiplex assays with the custom assay design tool?
The design tool is not intended to create multiplex assay designs. Individual assay designs may be compatible in multiplex reactions, but depending on which microbes are included in the sample and the target region of the assay, incompatibilities must be taken into account. More details on multiplexing of assays can be found in the Microbial dPCR Handbook.
FAQ ID - 4072
What length of the DNA anchor sequence can be used as input for the custom assay design tool?
Sequences ranging between 200 bp and 5000 bp can be used. Recommended are at least 500 bp when possible.
FAQ ID - 4073