Digitale PCR

Anwendungen der Nanoplatten-dPCR

Was ist mit der digitalen PCR möglich?

Egal ob Sie mit wertvollen Proben zu tun haben, seltene Mutationen analysieren oder Proben untersuchen, die mit Inhibitoren belastet sind, mit der Nanoplatten-dPCR erhalten Sie wertvolle und reproduzierbare Daten. Der schnelle, automatisierte Workflow reduziert die Variabilität erheblich und verbessert die Konsistenz. Zugleich ist er so einfach, dass er nur sehr wenig Schulungsaufwand erfordert.

Mit der digitalen PCR und insbesondere der Nanoplatten-dPCR auf QIAcuity wird die Forschung revolutioniert – da die Fragen, gestellt und beantwortet werden können, sich fundamental verändern. Damit lassen sich Anwendungen unterstützen, die bisher durch die Einschränkungen der qPCR und anderer dPCR-Technologien behindert waren. Erfahren Sie unten, was die Technologie für Ihre spezifische Anwendung leisten kann.

Der Nachweis seltener Mutationen bezieht sich auf den Nachweis einer Sequenzvariante, die in einem Pool aus Wildtyp-Hintergründen in nur sehr geringer Menge vorliegt (weniger als 1 % oder sogar 0,1 %). Daher ist zum Nachweis und zur Quantifizierung von seltenen Ereignissen wie Punktmutationen oder Einzelnukleotid-Polymorphismen (SNP) eine sensitive, genaue und präzise Methode erforderlich. Die Herausforderung besteht in der Unterscheidung zwischen zwei in hohem Maße identischen Sequenzen, von denen eine deutlich häufiger vorliegt als die andere.

Vorteile der Verwendung von Nanoplatten-dPCR für den Nachweis seltener Mutationen
  • Möglichkeit, ein großes Eingabe-Reaktionsvolumen in 26.000 Partitionen zu laden – dies erhöht die Chancen, ein seltenes Target zu finden, erheblich 
  • Multiplexierung bei der Sequenzierung von Mutanten- und Wildtypen zum Nachweis geringer Anteile seltener Mutantenmoleküle gegen einen weit verbreiteten Wildtyp-Hintergrund

Die sprichwörtliche Suche nach der Nadel im Heuhaufen

Der Nachweis seltener Mutationen in Flüssigbiopsien ist wie die Suche nach der legendären Nadel im Heuhaufen. Mit der digitalen PCR lassen sich diese seltenen Moleküle nachweisen und quantifizieren. Sie bietet neue Möglichkeiten für die Entdeckung spezifischer Biomarker, den frühzeitigen Nachweis von Tumoren und die Überwachung des Ansprechens auf eine Behandlung. Die digitale PCR in Nanoplatten mit QIAcuity bietet einen Walkaway-Workflow, eine überlegene Partitionierung und eine einzigartige Hyperwell-Funktion, wodurch sie die ausgezeichnete Sensitivität und Präzision der dPCR so erweitert, dass das Auffinden einer einzigen Mutante selbst in anspruchsvollsten Proben möglich wird.

Bei der Analyse von Kopienzahlvariationen (CNV) wird die Anzahl an Kopien eines bestimmten Gens im Genom einer Person bestimmt. Es ist bekannt, dass Gene in zwei Kopien je Genom vorliegen; in einigen Fällen können diese Gene jedoch auch häufiger vorliegen. Genamplifikation (die Onkogene aktiviert) und -deletion (die Tumorsuppressorgene inaktiviert) sind wichtige Kopienzahlveränderungen (CNA), die ebenso wie Genomveränderungen wie Punktmutationen, Translokationen und Inversionen Auswirkungen auf krebsbezogene Gene haben. Die meisten krebsassoziierten Gene, die von CNA beeinflusst werden, wurden als kritische Gene in Krebssignalwegen definiert, die an der Karzinogenese und dem Fortschreiten von Krebs beteiligt sind. CNV sind eine wesentliche Quelle der genetischen Diversität (Deletion oder Duplikation eines Locus) und erlauben die Untersuchung von Genen, die mit häufigen neurologischen und Autoimmunerkrankungen, Erbkrankheiten und unerwünschten Arzneimittelnebenwirkungen verbunden sind.

Vorteile der Verwendung von Nanoplatten-dPCR für die CNV-Analyse
  • Erkennung von weniger als 1,2-fachen Veränderungen in CNVs, mit Ergebnissen in etwa 2 Stunden
  • Verbesserte Wirtschaftlichkeit und höherer Durchsatz bei der dPCR CNV-Analyse mit der 8.5K Nanoplatte oder Multiplexierungsfähigkeiten sowie einer feineren Unterscheidung aufeinanderfolgender Kopienzahlvarianten mit der 26K Nanoplatte
  • Automatische Berechnung der CNV mit der QIAcuity Software Suite und Möglichkeit zur Entwicklung maßgeschneiderter Assays

Digitale Multiplex-PCR für Analysen mitochondrialer und genomischer Target-Kopienzahl

Entdecken Sie einen Workflow für Hochdurchsatz-Analysen von Target-Kopienzahlen in kultivierten Zellen. Das Verfahren nutzt die schnelle und genaue Zellsortierung von CellenONE, um sicherzustellen, dass in nachgeschalteten Reaktionen eine exakte Anzahl von Zellen verwendet wird. Die Proben werden auf dem QIAcuity Digital PCR System mit einem sondenbasierten Nachweis und Multiplexierung von bis zu fünf Targets in einer einzigen dPCR-Reaktion mit minimalem Optimierungsbedarf verarbeitet. Der Workflow ermöglicht auf Einzelzellebene eine genaue absolute DNA-Quantifizierung mittels dPCR für die Analyse von Targets mit geringer Häufigkeit sowie von Targets mit mehreren Kopien auf Einzellebene.

Copy variation

Eine Flüssigbiopsie, auch bekannt als flüssige Biopsie oder Flüssigphasen-Biopsie, ist die Probenahme und Analyse eines nicht festen biologischen Gewebes, zumeist Blut. Sie wird hauptsächlich als Diagnose- und Überwachungstool für Krankheiten wie Krebs eingesetzt. Die Flüssigbiopsie ist im Vergleich zur Gewebebiopsie weniger invasiv für den Spender. Wenn Tumorzellen absterben, setzen sie ctDNA ins Blut frei. Krebsmutationen in der ctDNA spiegeln jene aus herkömmlichen Tumorbiopsien wider und können als molekulare Biomarker zur Nachverfolgung der Krankheit genutzt werden. Die Herausforderung ist die geringe Konzentration an ctDNA aus den Tumorzellen im Blut. Der Goldstandard war bisher die Verwendung von NGS, Pyrosequenzierung oder Real-time qPCR, aber diese Methoden hatten den Nachteil einer eingeschränkten LOD. Bei der Pyrosequenzierung für Tumorgewebe liegt sie bei etwa 10 %, bei der NGS zwischen 1 und 5 % und bei der qPCR bei bis zu 1 %. Diese Limitierung bei der Nachweisgrenze stellt ein Problem bei der Überwachung auf ein mögliches Rezidiv beim Spender dar.

Vorteile der Verwendung von Nanoplatten-dPCR für die Flüssigbiopsie-Analyse
  • Laden Sie mit der QIAcuity Nanoplate 26K bis zu 28 µl Probe, um die LOD zu erhöhen und Teilprobenfehler zu minimieren. Dies erlaubt Ihnen, mehr Datenpunkte zu generieren, um auch kleine Veränderungen in der Expression oder ein Rezidiv zu erkennen.
  • Erkennen Sie äußerst seltene Mutationen mit einer Allelfrequenz von bis zu 0,01 %
  • Verarbeiten Sie weniger stark verarbeitete Proben wie Vollblut und Urin, da die dPCR-Messung durch die Amplifikationseffizienz nicht beeinflusst wird

Nachweis von PIK3CA-Mutation auf Basis der Flüssigbiopsie aus cfDNA mittels dPCR

In diesem Anwendungshinweis zeigen wir, wie das QIAcuity Digital PCR System für den zuverlässigen Nachweis äußerst seltener PIK3CA-Varianten in cfDNA genutzt werden kann. Die manuellen QIAamp Workflows und die automatisierten EZ2 und QIAsymphony Workflows lieferten mit hoher Ausbeute und Reinheit cfDNA aus großen Plasmavolumina von bis zu 10 ml. Die automatisierten QIAGEN Workflows machen zudem die manuelle Voranreicherung oder Vorbereitung von Platten überflüssig. Darüber hinaus zeigten wir, dass die Quantifizierungen von dPCR und Qubit vergleichbar sind, und demonstrierten die Fähigkeit von dPCR, PIK3CA-Mutationsfrequenzen in cfDNA mit hoher Genauigkeit und großer Kosten- und Zeitersparnis zu quantifizieren. 

Die zunehmende Prävalenz von Infektionskrankheiten und epidemischen Ausbrüchen unterstreicht die Notwendigkeit einer verbesserten Erkennung und Analyse von Mikroben, insbesondere von Krankheitserregern. Die Kombination aus Geschwindigkeit, hoher Sensitivität, Genauigkeit und absoluter Quantifizierung ist sowohl für den Pathogennachweis als auch die Mikrobiom-Analyse im Gesundheitswesen und in der Epidemiologie essenziell. Die digitale PCR, eine schnelle, sensitive und präzise Methode, hat zahlreiche Vorteile für die Identifizierung, den Nachweis, die Charakterisierung und Überwachung von Veränderungen in Pathogenen und Mikrobiomen. Die Anwendungsbereiche der dPCR für den Nachweis von Mikroorganismen erstreckt sich von Pathogenen in Lebensmitteln über Medikamentenresistenz bis hin zur Mikroorganismenforschung, der Untersuchung von Antibiotikaresistenzgenen bis hin zur Analyse der Viren/Bakterien-Wirts-Beziehung. 

Vorteile der Nanoplatten-dPCR für den Nachweis von Mikroorganismen
  • Präzise und absolute Quantifizierung von mikrobiellem Material, selbst aus komplexen Proben oder Proben mit hohem Gehalt an Inhibitoren
  • Mit der Nanoplate 26K sind größere Probenvolumen (bis zu 28 µl) für eine noch höhere Sensitivität und den Nachweis von Targets unterhalb der Nachweisgrenzen anderer handelsüblicher Assays möglich
  • Multiplexierung von bis zu fünf Assays aus einer Auswahl von kundenspezifischen Assays oder mehr als 700 Katalog-Assays für mikrobielle Targets (bakteriell, viral, Virulenzfaktoren, AMG usw.)

Abwasserkontrolle mit dPCR

Die Untersuchung von Abwasser auf Krankheitserreger wie SARS-CoV-2, Legionella spp. oder Salmonellen kann Krankheitsausbrüche vorhersagen und wichtige epidemiologische Daten liefern. Abwässer sind jedoch sehr heterogen, weshalb eine Methode benötigt wird, die seltene Targets in derartigen gemischten Materialien zu identifizieren. Hier zeigt sich die wahre Stärke der dPCR. Die absolute Quantifizierung mit dPCR erkennt seltene Ereignisse, reduziert die Auswirkungen von PCR-Inhibitoren und macht Standardkurven überflüssig, wodurch der Nachweis von Pathogenen in Abwasser vereinfacht wird.

Beim Testen der Viruslast wird die Menge eines spezifischen Virus in einer biologischen Probe gemessen. Die Ergebnisse werden als Anzahl der Kopien der Virus-RNA pro Milliliter Probe angegeben. Tests der Viruslast werden verwendet, um akute Virusinfektionen zu diagnostizieren, Behandlungsoptionen abzuwägen und das Ansprechen auf eine medizinische Behandlung zu überwachen.

Vorteile der Verwendung von Nanoplatten-dPCR für den Nachweis von Virulenzgenen
  • Erkennen Sie in geringer Menge vorhandene Gene mit der Nanoplate 26K, die eine stärkere Partitionierung pro Probe und ein höheres Probenladevolumen erlaubt
  • Analysemöglichkeit sowohl mikrobieller als auch viraler Targets inklusive hochspezifischem Nachweis von der Sequenz von Interesse
  • Präzise und effiziente Analyse durch Multiplexierung von bis zu fünf Targets in einer Reaktion

Verwendung von dPCR zur Identifizierung und Quantifizierung von durch Mücken als Vektoren übertragenen Krankheiten

Das QIAcuity Digital PCR System wurde für den Nachweis und die Quantifizierung von Viren in hoher und niedriger Konzentration in einem direkten Vergleich mit der quantitativen Real-time PCR (qPCR) verwendet. Die Viren werden von Stechmücken übertragen werden, die das West-Nil-Virus (Kat.-Nr. DMA00455) und das Flandern-Virus tragen. Das QIAcuity Digital PCR System in Kombination mit dem QIAcuity One-Step Viral RT-PCR Kit ermöglichte den präzisen Nachweis und die Quantifizierung von durch Vektoren übertragenen Viren in Stechmücken mit zuverlässigeren Ergebnissen als bei der qPCR, insbesondere für Targets mit geringer Häufigkeit. Die Multiplexierung ermöglicht den Nachweis und die Quantifizierung mehrerer Targets in einer einzigen Reaktion und erhöht so den Probendurchsatz bei geringeren Kosten pro Target.

Die digitale PCR ermöglicht eine Reihe von Gentherapie-Applikationen wie die Messung des Genomtiters des adenoassoziierten Virus, der Kopienzahl von Lentivirus-Vektoren sowie die Entwicklung und Herstellung von CAR-T-Zelltherapien. Dies ist von zentraler Bedeutung bei der Entwicklung wirksamer und reproduzierbarer Zell- und Gentherapien bei gleichzeitiger Gewährleistung der Patientensicherheit.

Virale Titerbestimmung

Entdecken Sie, wie die QIAcuity dPCR mit einer höheren Geschwindigkeit und einem insgesamt höheren Durchsatz sowie besserer Skalierbarkeit eine ebenso hohe Genauigkeit und Präzision bei der Quantifizierung von Virustitern erzielen kann wie die traditionelle ddPCR-Methode. Entdecken Sie unsere vollständigen Workflows für die Lyse viraler Vektoren über die Quantifizierung von Rest-DNA bis zur Vektor-Genom-Titration und Bestimmung der Genom-Integrität mit herausragender Genauigkeit, Reproduzierbarkeit und Geschwindigkeit.

Vorteile der Verwendung von Nanoplatten-dPCR für die AAV-Titration
  • Konsistente und robuste Bestimmung des endgültigen Titers dank effizienter Capsid-Lyse und Entfernung von Rest-DNA mit unseren speziellen Kits
  • Weniger Fehler und einfache Implementierung mit einem Protokoll und einer minimalen Anzahl von manuellen Schritten mit nur 10 Minuten Zeitaufwand
  • Höhere Genauigkeit und Flexibilität dank der Multiplexierung mit bis zu 10 Einzeltarget-Assays mit unterschiedlichen Farbstoffkombinationen – optional können Assays mit Genen von Interesse (GOI-Assays) auf 5-plex-Kapazität erweitert werden
  • Präzise Bewertung der Genomintegrität anhand von bis zu 5 Targets gleichzeitig dank unserer fortschrittlichen QIAcuity Softwarefunktion

Unsere wertvollsten Inhalte zur Zell- und Gentherapie an einem Ort

Entdecken Sie unseren Hub mit Fachinhalten, die Ihnen zeigen, welche spezifischen Vorteile der Einsatz von dPCR in der Zell- und Gentherapie bringt: Genauigkeit, Geschwindigkeit und Komfort. Hier finden Sie die neuesten Anwendungshinweise, wissenschaftlichen Poster, Webinare und Videos, die zeigen, wie die dPCR Ihnen helfen kann, fortschrittliche Therapien schneller auf den Markt zu bringen. Entdecken Sie welche vielfältigen Einsatzmöglichkeiten die dPCR auch bei Ihren Zell- und Gentherapieprojekten bietet, von der Forschung über die Bioprozessierung bis hin zur Qualitätskontrolle (QK).

Verbleibende Wirtszell-DNA (Residual Host Cell DNA, HCD) wird während des Herstellungsprozesses von biopharmazeutischen Produkten verschleppt. Die akzeptablen Konzentrationen wurden von Regulierungsbehörden wie der U.S. Food and Drug Administration und der Weltgesundheitsorganisation festgelegt. Kits zur digitalen Quantifizierung von Rest-DNA eignen sich ideal für die hochpräzise Quantifizierung von HCD in komplexen Bioprozessen. Zu den Wirtszellen, die häufig bei der Entwicklung von Gentherapien, therapeutischen Proteinen und anderen Biotherapeutika verwendet werden, gehören Human Embryonic Kidney 293 (HEK293), Chinese Hamster Ovary (CHO) und E. coli.  

Vorteile der Verwendung von Nanoplatten-dPCR für die Quantifizierung verbleibender Wirtszell-DNA
  • Einfacher Aufbau und Nachweis von Wirtszell-DNA dank eines vorgemischten Master-Mix und einer positiven/internen Kontrolle
  • Präziser Nachweis von verbleibender E. coli-, CHO- und HEK293-DNA bis in den niedrigen Femtogramm-Bereich, selbst bei Vorhandensein von PCR-Kontaminanten und Inhibitoren  
  • Artspezifische Multicopy-Target-Assays gewährleisten Ergebnisse, die nicht durch den Fragmentierungsgrad der resDNA, beeinflusst werden
  • Validierung der Quantifizierungsgenauigkeit oder Überbrückungsstudien unter Verwendung der dPCR-verifizierten Standards sind möglich

Direkte Quantifizierung von verbleibender Wirtszell-DNA mit der QIAcuity Digital PCR Platform

Das Monitoring der verbleibenden Wirtszell-DNA (resDNA oder HCD) ist ein wichtiger Schritt bei der Herstellung von Proteinen, Impfstoffen und anderen Biopharmazeutika. Die potenzielle Verschleppung von HCD stellt ein Sicherheitsrisiko dar und wird von den Aufsichtsbehörden sorgfältig überwacht. In diesem wissenschaftlichen Poster sehen Sie, wie sich die digitale PCR zur bevorzugten Nachweismethode zur Quantifizierung von Rest-DNA entwickelt hat, Grund dafür sind ihre beispiellose Sensitivität und Genauigkeit bei niedrigeren Template-Einsatzmengen aus komplexen Bioprozess-Zwischenprodukten.

Mykoplasmen sind Kontaminanten von biologischen Produkten, die aus Zelllinien in der biopharmazeutischen Industrie gewonnen werden. Mykoplasmen können in Zellkulturen als Folge einer Kontamination der Ausgangszelllinien selbst (Zellsubstrate) oder durch zufällige Verschleppung von Mykoplasmen während der Produktion auftreten. Es sind mehrere Richtlinien zum Kontaminationsrisiko und technische Veröffentlichungen zur Mykoplasmensicherheit bei der Herstellung biologischer Produkte verfügbar.

Die digitale PCR kann zum Nachweis von Kontaminationen in Zellkulturen und anderen aus Zellkulturen gewonnenen biologischen Produkten verwendet werden. So ist zum Beispiel das QIAcuity Mycoplasma Quant Kit ein RT-dPCR-Kit, das rRNA und DNA nachweist, was eine hohe Sensitivität der Methode ermöglicht. Eine interne Amplifikationskontrolle verhindert falsch negative Ergebnisse aufgrund von PCR-Inhibitoren, unsachgemäßer RNA-Extraktion oder unsachgemäßer RT-Reaktion. Mit dem sondenbasierten Assay können 127 verschiedene Mykoplasmenarten quantifiziert und nachgewiesen werden.

Vorteile der Verwendung von Nanoplatten-dPCR für den Nachweis von Mykoplasmen
  • Konform: Der NAT(Nucleic Acid Technique)-Workflow zur Untersuchung von Mykoplasmen ist konform mit dem Europäischen, US-amerikanischen und Japanischen Arzneibuch
  • Schnell: Keine zeitaufwendige Kultivierung von Mykoplasmen erforderlich
  • Sensitiv: Der Nachweis von rRNA ermöglicht eine höhere Sensitivität als die Verwendung von nur DNA, weil in einer einzigen Bakterienzelle mehrere Kopien vorhanden sind (Nachweis von < 10 CFU/ml). Mit Assay lässt sich auch dann noch DNA nachweisen, wenn der RT-Schritt übersprungen wird, was ein hohes Maß an Flexibilität schafft.
  • Vorab validiert: Der Workflow wurde als Teil eines umfassenden Validierungsberichts ausgiebig getestet. Dadurch haben Sie selbst weniger Validierungsaufwand.
  • Zehn Mycoplasma Standard CFU Kits zur internen Validierung oder als Positivkontrolle ohne Eintrag lebender Mykoplasmen

Beim Genexpressions-Profiling werden gleichzeitig die Expressionsniveaus mehrerer Gene für zwei oder mehr Proben verglichen. Diese Analyse kann Wissenschaftlern helfen, die molekulare Grundlage phänotypischer Unterschiede zu ermitteln und Zielgene für tiefergehende Studien auszuwählen. Genexpressions-Profiling liefert wertvolle Erkenntnisse über die Rolle der differenziellen Genexpression in normalen biologischen Zuständen und bei Erkrankungen.

Vorteile der Nanoplatten-dPCR für die Genexpression-Quantifizierung
  • Weisen Sie geringfügige Veränderungen nach, insbesondere bei geringen Mengen an Templates
  • Validierte Ergebnisse mit einer absoluten Konzentration und Häufigkeit von unter 1 % je nach Eingabemenge
  • Erreichen Sie mit Nanoplate 26K eine höhere Genauigkeit und einen breiten dynamischen log5-Bereich oder führen Sie auf einer Nanoplate 8.5K wirtschaftliche Analysen mit 12-µl-Reaktionen und Hochdurchsatz-Optionen für „ähnlich stark“ exprimierte Targets (bis zu ca. 4-fache Änderung der Expression) durch

Vergleich von dPCR und qPCR bei der Quantifizierung von Genexpression und Bakterienhäufigkeit in Wespen

Es gibt bereits qPCR-Methoden zur Bewertung der Genexpression und der Bakterienzahl in Arthropoden. Obwohl die qPCR Vorteile für die Genexpressionsanalyse hat, unterliegt sie jedoch einigen Einschränkungen, da z. B. Referenzmaterialien nötig sind. In diesem Anwendungshinweis können Sie die Leistungen vergleichen. In diesem Anwendungshinweis werden die Leistungen von qPCR und dPCR bei der Quantifizierung der Genexpression und der Wolbachia-Häufigkeit in parasitoiden Nasonia-Wespen verglichen.

gene expression analysis

Beim MicroRNA(miRNA)-Expressionsprofiling werden gleichzeitig die Expressionsniveaus mehrerer oder einzelner miRNAs zwischen zwei oder mehr Proben verglichen. Diese Analyse kann Wissenschaftlern helfen, miRNA als Biomarker bei akuten Erkrankungen wie Krebs zu identifizieren und zu quantifizieren. Sie liefert wertvolle Erkenntnisse über die Rolle der miRNA-Expression in normalen biologischen Zuständen und bei Krankheiten.

Vorteile der Nanoplatten-dPCR für die miRNA-Expressionsanalyse
  • Erkennung einzelner Nukleotidunterschiede in eng sequenzverwandten miRNAs dank der hohen Spezifität der dPCR
  • Absolute Quantifizierung subtiler miRNA-Expressionsänderungen, insbesondere bei kleiner Template-Zahl

Analyse von miRNAs in definierten Zellpools und Einzelzellen mittels digitaler PCR

Lesen Sie in diesem Anwendungshinweis mehr darüber, wie die Kombination aus cellenONE und QIAcuity eine absolute Quantifizierung von miRNAs aus gut definierten Zellpools und auf Einzelzellebene mit hohem Durchsatz ermöglicht. Erfahren Sie mehr dazu, wie FastLane Lysepuffer den Zeitaufwand für manuelle Handgriffe verringert hat. Lesen Sie zudem, wie die EG-basierte Chemie von QIAcuity miRNA-Analysen ohne hohen Optimierungsaufwand ermöglicht. Entdecken Sie den gesamten Workflow von der Zellsortierung mit cellenONE bis zur miRNA-Quantifizierung mit QIAcuity und sehen Sie, wie er eine sensitive, reproduzierbare und lineare Quantifizierung mit Zelllysaten wie RT- und PCR-Proben ermöglicht. 

Digitale Multiplex-PCR-Assays haben in der Lebensmittelindustrie ein breites Anwendungsspektrum, darunter behördliche Kontrollen, Qualitätssicherung, GVO-Tests, Aufdeckung von Lebensmittelbetrug und Überwachung lebensmittelbedingter Krankheiten. Mithilfe dieser Assays können Tierarten identifiziert und die Herkunft von Fleischprodukten zurückverfolgt werden. So kann zum Beispiel in einer einzigen Reaktion erfolgreich die Herkunft von Schwein, Kamel, Schaf, Esel, Ziege, Kuh und Huhn unterschieden werden. Sie werden außerdem bei GVO-Tests zur Quantifizierung von Transgenen verwendet, wobei Studien eine höhere Sensitivität und Wiederholbarkeit im Vergleich zur qPCR gezeigt haben. Zur Aufdeckung von Lebensmittelbetrug können dPCR-Assays tierische Bestandteile in vegetarischen oder veganen Produkten identifizieren, indem sie auf spezifische mitochondriale und chloroplastische DNA-Marker abzielen. Zur Gewährleistung der Sicherheit und Qualität von Lebensmitteln lass sich darüber hinaus mit dPCR gleichzeitig mehrere mikrobielle Krankheitserreger wie E. coli, L. monocytogenes, S. aureus und S. enterica nachweisen.

Vorteile der Verwendung von Nanoplatten-dPCR für die Lebensmittelprüfung
  • Ideal für Proben mit komplexer Matrix dank Multiplexierung und die Möglichkeit, mithilfe der dPCR die Beeinflussung durch Änderung der Amplifikationseffizienz aufgrund von Matrixunterschieden zwischen Referenzmaterialien und Proben zu minimieren
  • Hoher Durchsatz dank Multiplexing von bis zu fünf Kanälen und einem 8-Platten-System
  • Zuverlässiger Nachweis seltener GMO-Ereignisse durch reduzierten Hintergrund dank Partitionierung

Im Vergleich zu den herkömmlichen Methoden zur Massen-Analyse von Zellpopulationen können mit der Einzelzellanalyse Daten auf Ebene einzelner Zellen gewonnen werden, was den Forschenden hilft, zelluläre Heterogenität, biologische Funktionen, Prozesse und Krankheitsmechanismen besser zu verstehen. Häufig genutzte Methoden der Einzelzellanalyse wie PCR, qPCR oder Next-Generation Sequencing (NGS) sind jedoch nicht immer empfindlich genug, um das Ziel von Interesse nachzuweisen.

Die digitale PCR ist eine Option für die Einzelzellanalyse, die immer mehr an Beliebtheit gewinnt, da es kosteneffiziente, intuitive und genaue dPCR-Plattformen gibt, die einen hohen Durchsatz, eine hohe Sensitivität des Nachweises und hohe Präzision bieten.

Vorteile der Verwendung von Nanoplatten-dPCR für die Einzelzellanalyse
  • Hochpräzise dank physischer Partitionierung, die stabiler als Tröpfchen ist
  • Der sondenbasierte Nachweis ermöglicht die Multiplexierung von bis zu fünf Targets in einer einzigen dPCR-Reaktion bei minimaler Optimierung
  • Präzise Ergebnisse ermöglichen die Analyse von Targets in geringen Mengen und von Targets mit mehreren Kopien auf Einzelzellebene.

Digitale Multiplex-PCR zur Analyse der Genexpression auf Einzelzellebene

Die Genexpressionsanalyse auf Einzelzellebene ermöglicht es uns, die Heterogenität der einzelnen Zellen zu erfassen und nicht den durchschnittlichen Output einer Zellpopulation. Der Transkriptomanalyse mit herkömmlichen PCR- und NGS-basierten Techniken fehlt es häufig an der erforderlichen Sensitivität, um Einzelzell-Targets mit geringer Häufigkeit zu erkennen. Die digitale PCR ist die Methode der Wahl für die absolute Quantifizierung von RNA-Targets, da sie selbst subtile Veränderungen in der Zielgenenexpression bis hinunter auf die Ebene einer einzelnen Zelle untersuchen kann. In diesem Anwendungshinweis erfahren Sie mehr zu einem Arbeitsablauf, der für die Hochdurchsatzanalyse der Genexpression in kultivierten Zellen die hochpräzise Einzelzellisolierung mit Nanoplatten-basierter dPCR kombiniert.

Nukleasen wie Zinkfinger (ZFN), Transcription activator-like effector (TALEN) und Clustered regularly interspaced short palindromic repeat (CRISPR) werden zum Editing des Genoms einer Zelle verwendet. Diese Nukleasen produzieren stellenspezifische DNA-Doppelstrangbrüche (DSBs), welche dann durch die unpräzisen, fehleranfälligen Stoffwechselwege des Non-homologous end joining (NHEJ) (Spender-Template/präzise Punktmutation) oder der Homology-directed repair (HDR) (Deletion/Indels/Insertionen) repariert werden können, was eine gezielte Mutagenese zur Folge hat. Dadurch entsteht eine gemischte Population von Zellen mit heterogenen Indel-Fehlern und unterschiedlichen Allel-Editing-Frequenzen. Im Anschluss werden die Häufigkeiten des Genomeditings am gewünschten Locus gemessen. Klonale Zelllinien isolieren Einzelzellen, welche dann untersucht werden, um das Genomediting-Ereignis zu verifizieren.

Vorteile der Verwendung von Nanoplatten-dPCR für den Nachweis von Genomediting (CRISPR-Cas9)
  • Höhere Sensitivität ermöglicht den Nachweis von Editing-Ereignissen mit Häufigkeiten von nur 0,5 %
  • Absolute Quantifizierung von Editing-Ereignissen ab nur 5 ng Gesamt-gDNA
  • Kann in klonalen Populationen zwischen homozygoten und heterozygoten Edits unterscheiden

Die Quantifizierung der Bibliothek für das Next Generation Sequencing ist ein wesentlicher Schritt, um Ihre Flusszellen mit voller Leistung zu nutzen. Die Forschung zeigt, dass das Über- oder Unterladen einer NGS-Bibliothek nach einer ungenauen Quantifizierung der Bibliothek die Datenausgabe und -qualität beeinträchtigt. Die Verwendung der digitalen PCR zur Bestimmung der absoluten Konzentration eines NGS-Bibliothekspools kann von großem Vorteil sein, um eine optimale Ausbeute zu erzielen und die Kosten pro Probe zu senken.

Vorteile der digitalen Nanoplatten-PCR zur Quantifizierung der NGS-Bibliothek
  • Absolute Quantifizierung von amplifizierbaren Bibliotheksfragmenten ohne systematische Abweichung bei der Amplifikation und ohne standardmäßige systematische Messabweichung mit Ergebnissen in 2 Stunden, geeignet für Routinetests
  • Hohe Reproduzierbarkeit und überlegene Einheitlichkeit für das Bibliothekspooling, das alle Illumina Bibliothekstypen mit einem Assay abdeckt

Webinar:  Quantifizierung der NGS-Bibliothek mit digitaler Nanoplatten-PCR

Wenn die NGS-Flusszellen nicht voll ausgelastet sind, kann Next Generation Sequencing ein langwieriger, teurer Prozess sein. Die häufigste Ursache für Ladeprobleme ist eine schlechte Quantifizierung der Bibliothek. In diesem Webinar erfahren Sie, wie Sie mit der digitalen PCR NGS-Bibliotheken unabhängig von ihrer durchschnittlichen Fragmentlänge und -zusammensetzung genau messen können.

Actomes bahnbrechende Protein Interaction Coupling(PICO)-Technologie nutzt die Vorteile des QIAcuity Digital PCR System und ermöglicht einen äußerst vielseitigen und sensitiven Ansatz zum Nachweis und zur Quantifizierung einzelner Proteine und Proteininteraktionen. Die PICO-Technologie übersetzt den komplexen Proteinstatus in DNA-Barcodes, die mit dPCR amplifiziert und nachgewiesen werden können. Dies kann insbesondere bei der Untersuchung zellulärer Stoffwechselwege, der Suche nach Protein-Biomarkern, der Entwicklung neuartiger Assays für die pharmazeutische Forschung oder der Durchführung von Multiomics-Analysen von Vorteil sein.

Vorteile der Verwendung von Nanoplatten-dPCR für den Proteinnachweis
  • Die einzige Technologie auf dem Markt für die Quantifizierung von Proteinen mittels dPCR
  • Ermittelt Proteine, Protein-Protein-Interaktionen und posttranslationale Modifikationen auf Einzelzellebene

Messung von Proteinen und Protein-Interaktionen in biologischen Proben mit einer einzigen molekularen Sensitivität mittels Protein Interaction Coupling (PICO) und dPCR

Erfahren Sie mehr zur PICO-Technologie, den kompletten Workflow und wann die digitale PCR mit QIAcuity ins Spiel kommt. Zudem erfahren Sie unter anderem mehr zu den Vorteilen von PICO gegenüber Western-Blots und Ko-Immunopräzipitation.

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