QIAEX II System Gel Extraction Kit

Zur Aufreinigung von DNA-Fragmenten (40 bp bis 50 kb) aus Gelen und Lösungen

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QIAEX II Gel Extraction Kit (150)

Cat. No. / ID:   20021

Für 150 Extraktionen: 3 × 0,5 ml QIAEX II Suspension, Puffer
403,00 €
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Reactions
150
500
QIAEX II System ist für molekularbiologische Anwendungen vorgesehen. Dieses Produkt ist nicht für die Diagnose, Prävention oder Behandlung einer Krankheit bestimmt.

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Eigenschaften

  • Effiziente Extraktion von DNA von 40 bp bis 50 kb
  • Gelextraktion aus TAE- oder TBE-Agarose- und Polyacrylamidgelen
  • Enthält kein Natriumjodid, das nachfolgende Reaktionen stören könnte
  • Keine Scherung großer DNA-Fragmente

Angaben zum Produkt

Das QIAEX II System enthält eine Silikapartikel-Suspension, an die sich DNA-Fragmente in Gegenwart chaotroper Salze binden. Die QIAEX II Suspension wird Lösungen oder aufgelösten Agarosegelschnitten zugesetzt und bindet DNA. Die Partikel werden durch einen kurzen Zentrifugationsschritt gewonnen und gewaschen. DNA von 40 bp bis 50 kb wird in Tris-Puffer oder Wasser eluiert.

Leistung

Mit dem QIAEX II System werden 10 ng bis 10 µg DNA effizient zurückgewonnen (siehe Abbildung  „Konsistente Rückgewinnung“). Das vielseitige Verfahren für die Batch-Aufreinigung von Gelfragmenten lässt sich mit 30 µl QIAEX II Suspension leicht auf eine Bindekapazität von 15 µg hochskalieren.

Das QIAEX II System enthält Silika-Partikel für die Aufreinigung von 60–95 % DNA-Fragmenten (40 bp – 50 kb). Ein Volumen von 10 µl QIAEX II Suspension bindet bis zu 5 µg DNA, die anschließend in 20 µl eluiert wird.

Rückgewinnung nach Größe

DNA-GrößeRückgewinnung, Prozent*
44 bp75
75 bp75
500 bp95
7,5 kb85
23,5 kb75
48,5 kb60
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Prinzip

Die Aufreinigung von DNA-Fragmenten mit dem QIAEX II System basiert auf der Solubilisierung von Agarose und der selektiven Adsorption von Nukleinsäuren an QIAEX II-Silikagelpartikel in Gegenwart von chaotropem Salz. QIAEX II trennt DNA von Salzen, Agarose, Polyacrylamid, Farbstoffen, Proteinen und Nukleotiden ohne Phenolextraktion oder Ethanolpräzipitation. QIAEX II eignet sich für jede Art von Agarose in TAE- oder TBE-Puffern.

QIAEX II-Partikel bilden eine Suspension für die Gelextraktion und gewährleisten die effiziente Rückgewinnung ohne Scherung, selbst bei großen DNA-Fragmenten. Optimierte Puffer ermöglichen die DNA-Rückgewinnung ohne Natriumjodid, das sich nur schwer aus DNA-Proben entfernen lässt und nachfolgende Reaktionen beeinträchtigen kann.

Der mit dem QIAEX II System verwendete Solubilisierungs- und Bindepuffer enthält einen einzigartigen pH-Indikator. Ein einfacher Farbwechsel zeigt an, ob der pH-Wert der Bindungsmischung für eine effiziente Adsorption der DNA an die QIAEX II-Silikapartikel optimal ist (siehe Abbildung  „pH-Indikatorfarbstoff“). Der Farbstoff ermöglicht auch die einfache Visualisierung nicht aufgelöster Agarose in der Bindungsmischung und gewährleistet so die vollständige Solubilisierung und damit eine maximale Ausbeute.

Der pH-Indikatorfarbstoff im Lösungs- und Bindepuffer erlaubt die einfache visuelle Bestimmung des optimalen pH-Werts für die DNA-Adsorption (pH ≤7,5). Bei häufig verwendetem oder falsch angesetztem Agarosegel-Elektrophoresepuffer kann das Bindungsgemisch einen falschen pH-Wert aufweisen. In diesem Fall lässt sich der pH-Wert leicht durch Zugabe von 10 µl 3 M Natriumacetat, pH 5,0, einstellen.

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Verfahren

QIAEX II-Silikagelpartikel werden zum aufgelösten Gelschnitt hinzugefügt, und die Partikel werden durch einen kurzen Zentrifugationsschritt gewonnen (siehe Flussdiagramm  „QIAEX II-Verfahren“). Nach dem Waschen wird das aufgereinigte DNA-Fragment in 20 µl Tris-Puffer oder Wasser eluiert.

Das QIAEX II System enthält die QIAEX II-Suspension zusammen mit Binde- und Waschpuffern und einem umfassenden Handbuch. Es enthält Protokolle für die Aufreinigung von DNA aus Agarosegelen, Lösungen und Polyacrylamidgelen.

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Anwendungen

Die mit dem QIAEX II System aufgereinigte DNA lässt sich direkt für die meisten Anwendungen verwenden, darunter:

  • Restriktionsverdau
  • Markierung
  • Ligation
  • PCR

Eigenschaften Spezifikationen
Bindekapazität5 µg/10 µl
Elutionsvolumen20 µl
FormatRöhrchen
Fragmentgröße40 bp – 50 kb
VerfahrenManuell
Rückgewinnung: Oligonukleotide, dsDNARückgewinnung: dsDNA-Fragmente
Entfernung von < 10mer- und 17- bis 40mer-Farbstoffterminator-ProteinenEntfernung von < 40meren
Probentyp: ApplikationenDNA: PCR-Reaktionen
TechnologieSilika-Technologie

Ergänzende Daten und Abbildungen

Ressourcen

Kit Handbooks (1)
Safety Data Sheets (1)
Quick-Start Protocols (1)
Certificates of Analysis (1)

Publications

T-B+NK+ severe combined immunodeficiency caused by complete deficiency of the CD3zeta subunit of the T-cell antigen receptor complex.
Roberts JL; Lauritsen JP; Cooney M; Parrott RE; Sajaroff EO; Win CM; Keller MD; Carpenter JH; Carabana J; Krangel MS; Sarzotti M; Zhong XP; Wiest DL; Buckley RH;
Blood; 2006; 109 (8):3198-206 2006 Dec 14 PMID:17170122
Role for nonstructural protein 1 of severe acute respiratory syndrome coronavirus in chemokine dysregulation.
Law AH; Lee DC; Cheung BK; Yim HC; Lau AS;
J Virol; 2006; 81 (1):416-22 2006 Oct 11 PMID:17035307
Effects of the chemotherapeutic agent doxorubicin on the protein C anticoagulant pathway.
Woodley-Cook J; Shin LY; Swystun L; Caruso S; Beaudin S; Liaw PC;
Mol Cancer Ther; 2006; 5 (12):3303-11 2006 Dec PMID:17172434
Exportin-5 orthologues are functionally divergent among species.
Shibata S; Sasaki M; Miki T; Shimamoto A; Furuichi Y; Katahira J; Yoneda Y;
Nucleic Acids Res; 2006; 34 (17):4711-21 2006 Sep 8 PMID:16963774

FAQ

I bound an 11 kb DNA fragment to a QIAquick column; is it completely lost?

Larger DNA fragments bind more tightly to the QIAquick columns. It is difficult to predict whether a DNA fragment larger than 10 kb can be efficiently recovered, because this depends on base composition as well as fragment size. If the fragment is only a few kb larger than the 10 kb limit, it can be helpful to heat the elution buffer EB to 60°C and let it incubate on the column for a few minutes before centrifuging. However, please note that it will become less likely to recover your sample the larger the fragment size is. As we cannot guarantee recovery of fragments larger than the maximum cutoff size, we do not recommend to purify such fragments using QIAquick Kits.

The QIAEX II Kit can be used to extract DNA fragments up to 50 kb from agarose or polyacrylamide gels.

 

FAQ ID -756
How can I improve ligation efficiency of DNA from a QIAEX II Gel Extraction Kit?
Assuming that the ligation conditions are correct, QIAEX II particle carryover may affect ligation efficiency. Under low salt conditions, enzymes may bind to QIAEX II particles, thus reducing enzymatic activity in the ligation reaction. To remove the particles, centrifuge the tube containing the DNA for 30 seconds before pipetting the DNA.
FAQ ID -141
Can I store agarose gel slices containing DNA for gel extraction at a later point?
Cut out the slice of agarose containing the DNA fragment of interest, and store it at 4oC in an Eppendorf tube sealed with Parafilm.
FAQ ID -313
Is it possible to isolate single stranded DNA (ssDNA) with the QIAEX II Kit from agarose or polyacrylamide gels?
Yes, single stranded DNA can be isolated from agarose or polyacrylamide gels using the QIAEX II Gel Extraction Kit.
FAQ ID -576
Why does my DNA sample float out of the slot when loading it onto an agarose gel?

DNA fragments purified with the QIAGEN DNA Cleanup Systems, i.e., the QIAquick PCR Purification Kit, the MinElute Reaction Cleanup Kit, the QIAEX II Gel Extraction Kit etc. may float out of the loading wells of agarose gels due to residual ethanol carried over from the wash step with Buffer PE (despite the addtition of glycerol-containing loading buffer).

Use either of the following options to remove residual ethanol from the eluate:

  • re-purify the sample using a QIAquick-, or MinElute column, or QIAEX II resin
  • incubate the eluate at 56°C for 10 min to evaporate the ethanol
  • dry down the sample in a vacuum centrifuge, and resuspend the pellet in a small volume of sterile water
FAQ ID -205
Is it possible to clean up a methylation reaction containing bisulfite with QIAquick Cleanup Kits?
Yes, bisulfite containing methylation reactions can be cleaned up with our silica-based cleanup products, such as QIAquick and QIAEX II. Please see Goyon et al. (1994),  'Perpetuation of cytosine methylation in Ascobolus immersus implies a novel type of maintenance methylase', published in J Mol Biol. 1994 Jul 1;240(1):42-51, for a reference.
FAQ ID -519
What is the small band below my fragment of interest on an agarose gel after DNA cleanup using QIAquick?

Occasionally, DNA fragments eluted from the silica matrix of QIAquick, MinElute or QIAEX II Kits will contain denatured single-stranded DNA (ssDNA), appearing as a smaller band on an analytical gel. Under certain conditions, chaotropic agents (present in all silica-based DNA purification methods) can denature DNA fragments. This is a rare event that may be influenced by sequence characteristics such as the presence of inverted repeats or A–T-rich stretches.

Because salt and buffering agents promote renaturation of DNA strands, the following tips are recommended:

  • use the eluted DNA to prepare your downstream enzymatic reaction, but omit the enzyme. Incubate the reaction mix at 95°C for 2 minutes to reanneal the ssDNA, and allow the tube to cool slowly to room temperature before adding the enzyme and proceeding
  • alternatively, the DNA can be eluted from the silica-gel membrane or resin in 10 mM Tris buffer containing 10 mM NaCl. However, the salt concentration of the eluate must then be taken into consideration in downstream applications.
FAQ ID -148
How can I extract DNA from a polyacrylamide (PAGE) gel?

The QIAEX II and QIAquick Gel Extraction Kit can be used to extract DNA from polyacrylamide gels.

The QIAEX II Handbook contains a protocol for Polyacrylamide Gel Extraction. A specialized User-Developed Protocol (QQ05) is available when using the QIAquick Gel Extraction Kit for this purpose.

Both protocols require the preparation of a diffusion buffer and a disposable plastic column or syringe barrel containing a Whatman GF/C filter or siliconized glass wool. To ensure optimal diffusion, cut the gel slices as small as possible, and use 2 volumes of diffusion buffer per 1 volume of gel. Increasing incubation time (protocol step 3) may result in higher yields.

FAQ ID -120