Was ist mit der digitalen PCR möglich?
Ganz gleich, ob Sie mit wertvollen Proben arbeiten, seltene Mutationen analysieren oder Proben untersuchen, die mit Inhibitoren belastet sind – die Nanoplatten-dPCR liefert präzise und reproduzierbare Daten. Der schnelle, automatisierte Workflow reduziert die Variabilität erheblich und verbessert die Konsistenz. Zugleich ist er so einfach, dass er nur sehr wenig Schulungsaufwand erfordert.
Die digitale PCR, und insbesondere die Nanoplatten-dPCR auf dem QIAcuity, revolutioniert die Forschung, indem sie die Fragen, die Sie stellen und beantworten können, fundamental verändert. Die Methode ermöglicht Anwendungen, die bisher durch die Limitationen der qPCR und anderer dPCR-Technologien verhindert wurden. Erfahren Sie unten, was die Technologie für Ihre spezifische Anwendung leisten kann.
Nachweis seltener Mutationen
Der Nachweis seltener Mutationen bezieht sich auf den Nachweis einer Sequenzvariante, die in einem Pool aus Wildtyp-Hintergründen in nur sehr geringer Menge vorliegt (weniger als 1 % oder sogar 0,1 %). Daher ist zum Nachweis und zur Quantifizierung von seltenen Ereignissen wie Punktmutationen oder Einzelnukleotid-Polymorphismen (single nucleotide polymorphisms, SNPs) eine sensitive, genaue und präzise Methode erforderlich. Die Herausforderung besteht in der Unterscheidung zwischen zwei in hohem Maße identischen Sequenzen, von denen eine deutlich häufiger vorliegt als die andere.
Vorteile der Verwendung von Nanoplatten-dPCR für den Nachweis seltener Mutationen
- Möglichkeit, ein großes Eingabe-Reaktionsvolumen in 26.000 Partitionen zu laden – dies erhöht die Chancen, ein seltenes Target zu finden, erheblich
- Multiplexing bei der Sequenzierung von Mutationen und Wildtyp zum Nachweis geringer Anteile seltener Mutationsmoleküle vor einem Hintergrund an großen Mengen an Wildtyp
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Analyse von Kopienzahlvariationen
Bei der Analyse von Kopienzahlvariationen (CNV) wird die Anzahl an Kopien eines bestimmten Gens im Genom einer Person bestimmt. Es ist bekannt, dass Gene in zwei Kopien je Genom vorliegen; in einigen Fällen können diese Gene jedoch auch häufiger vorliegen. Genamplifikation (die Onkogene aktiviert) und -deletion (die Tumorsuppressorgene inaktiviert) sind wichtige Kopienzahlveränderungen in somatischen Zellen (copy number alterations, CNA), die zusätzlich zu Genomveränderungen wie Punktmutationen, Translokationen und Inversionen Auswirkungen auf krebsassoziierte Gene haben. Die meisten krebsassoziierten Gene, die von CNA beeinflusst werden, wurden als kritische Gene in Krebssignalwegen definiert, die an der Karzinogenese und dem Fortschreiten von Krebs beteiligt sind. Variationen der Kopienzahl in Keimbahnzellen (copy number variations, CNV) sind eine wesentliche Quelle der genetischen Diversität (Deletion oder Duplikation eines Locus) und erlauben die Untersuchung von Genen, die mit häufigen neurologischen und Autoimmunerkrankungen, Erbkrankheiten und unerwünschten Arzneimittelwirkungen verbunden sind.
Vorteile der Verwendung von Nanoplatten-dPCR für die CNV-Analyse
- Erkennung von weniger als 1,2-fachen Veränderungen in CNVs, mit Ergebnissen in etwa 2 Stunden
- Verbesserte Wirtschaftlichkeit und höherer Durchsatz bei der dPCR-CNV-Analyse mit der 8.5K Nanoplatte oder Multiplexingoptionen oder eine feineren Unterscheidung konsekutiver Kopienzahlvarianten mit der 26K Nanoplatte
- Automatische Berechnung der CNV mit der QIAcuity Software Suite und Möglichkeit zur Entwicklung maßgeschneiderter Assays
Flüssigbiopsie
Als Flüssigbiopsie, auch bekannt als flüssige Biopsie oder Flüssigphasen-Biopsie, wird die Probenahme und Analyse eines nicht festen biologischen Gewebes bezeichnet, zumeist Blut. Sie wird hauptsächlich als Diagnose- und Überwachungstool für Krankheiten wie Krebs eingesetzt. Die Flüssigbiopsie ist im Vergleich zur Gewebebiopsie weniger invasiv für die Spenderin oder den Spender. Wenn Tumorzellen absterben, setzen sie ctDNA ins Blut frei. Krebsmutationen in der ctDNA spiegeln jene aus herkömmlichen Tumorbiopsien wider und können daher als molekulare Biomarker zur Nachverfolgung der Krankheit genutzt werden. Die Herausforderung ist die geringe Konzentration an ctDNA aus den Tumorzellen im Blut. Der Goldstandard war bisher die Verwendung von NGS, Pyrosequenzierung oder Real-time qPCR, aber diese Methoden hatten den Nachteil einer eingeschränkten LOD. Bei der Pyrosequenzierung für Tumorgewebe liegt sie bei etwa 10 %, bei der NGS zwischen 1 und 5 % und bei der qPCR bei bis zu 1 %. Diese Limitierung der Nachweisgrenzen stellt ein Problem bei der Überwachung auf ein mögliches Rezidiv bei der Patientin oder dem Patienten dar.
Vorteile der Verwendung von Nanoplatten-dPCR für die Flüssigbiopsie-Analyse
- Laden Sie mit der QIAcuity Nanoplate 26K bis zu 28 µl an Probe, um die LOD zu erhöhen und Stichprobenfehler zu minimieren. Dies erlaubt Ihnen, mehr Datenpunkte zu generieren, um auch kleine Veränderungen in der Expression nachzuweisen oder ein Rezidiv zu erkennen.
- Erkennen Sie äußerst seltene Mutationen mit einer Allelfrequenz von bis zu 0,01 %
- Verarbeiten Sie auch unbearbeitete Proben wie Vollblut und Urin, da die dPCR-Messung durch die Amplifikationseffizienz nicht beeinflusst wird
Nachweis von Mikroorganismen
Die zunehmende Prävalenz von Infektionskrankheiten und epidemischen Ausbrüchen unterstreicht die Notwendigkeit von für Verbesserungen bei Nachweis und Analyse von Mikroorganismen, insbesondere von Krankheitserregern. Die Kombination aus Geschwindigkeit, hoher Sensitivität, Genauigkeit und absoluter Quantifizierung ist sowohl für den Pathogennachweis als auch die Mikrobiom-Analyse im Gesundheitswesen und in der Epidemiologie essenziell. Die digitale PCR bietet als schnelle, sensitive und präzise Methode zahlreiche Vorteile bei Identifizierung, Nachweis, Charakterisierung und Überwachung von Veränderungen in Pathogenen und Mikrobiomen. Die Anwendungsbereiche der dPCR für den Nachweis von Mikroorganismen erstrecken sich von Pathogenen in Lebensmitteln über Medikamentenresistenz, Mikroorganismenforschung und Untersuchung von Antibiotikaresistenzgenen bis hin zur Analyse der Viren/Bakterien-Wirts-Beziehungen.
Vorteile der Nanoplatten-dPCR beim Nachweis von Mikroorganismen
- Präzise und absolute Quantifizierung von mikrobiellem Material, selbst aus komplexen Proben oder Proben mit hohem Gehalt an Inhibitoren
- Mit der Nanoplate 26K sind größere Probenvolumen (bis zu 28 µl) für eine noch höhere Sensitivität und den Nachweis von Targets unterhalb der Nachweisgrenzen anderer handelsüblicher Assays möglich
- Multiplexing von bis zu fünf Assays aus einer Auswahl von kundenspezifischen Assays oder mehr als 700 Katalog-Assays für mikrobielle Targets (bakteriell, viral, Virulenzfaktoren, AMG usw.)
Quantifizierung der Viruslast
Beim Testen der Viruslast wird die Menge eines spezifischen Virus in einer biologischen Probe gemessen. Die Ergebnisse werden als Anzahl der Kopien der Virus-RNA pro Milliliter Probe angegeben. Tests der Viruslast werden verwendet, um akute Virusinfektionen zu diagnostizieren, Behandlungsoptionen abzuwägen und das Ansprechen auf eine medizinische Behandlung zu überwachen.
Vorteile der Verwendung von Nanoplatten-dPCR für den Nachweis von Virulenzgenen
- Erkennen Sie in geringer Menge vorhandene Gene mit der Nanoplate 26K, die mehr Partitionierung pro Probe und ein höheres Probenladevolumen erlaubt
- Möglichkeit der Analyse sowohl mikrobieller als auch viraler Targets durch hochspezifischen Nachweis der interessierenden Sequenz
- Präzise und effiziente Analyse durch Multiplexing von bis zu fünf Targets in einer Reaktion
Zell- und Gentherapie
Die digitale PCR ermöglicht eine Reihe von Anwendungen in der Gentherapie, wie die Messung des Genomtiters des adenoassoziierten Virus, der Kopienzahl von Lentivirus-Vektoren sowie die Entwicklung und Herstellung von CAR-T-Zelltherapien. Dies ist von zentraler Bedeutung bei der Entwicklung wirksamer und reproduzierbarer Zell- und Gentherapien bei gleichzeitiger Gewährleistung der Patientensicherheit.
Messung von Virustitern
Entdecken Sie, wie die QIAcuity dPCR schneller und mit insgesamt höherem Durchsatz sowie besserer Skalierbarkeit eine ebenso hohe Genauigkeit und Präzision bei der Quantifizierung von Virustitern erzielen kann wie die traditionelle ddPCR-Methode. Entdecken Sie unsere vollständigen Workflows von der Lyse viraler Vektoren über die Quantifizierung von Rest-DNA bis zur Vektor-Genom-Titration und Bestimmung der Genom-Integrität mit herausragender Genauigkeit, Reproduzierbarkeit und Geschwindigkeit.
Vorteile der Verwendung von Nanoplatten-dPCR für die AAV-Titration
- Konsistente und robuste Bestimmung des finalen Titers dank effizienter Capsid-Lyse und Entfernung von Rest-DNA mit unseren speziellen Kits
- Weniger Fehler und einfache Implementierung durch ein Protokoll mit einer minimalen Anzahl von manuellen Schritten und nur 10 Minuten Arbeitsaufwand
- Höhere Genauigkeit und Flexibilität durch Multiplexing von bis zu 10 Einzeltarget-Assays mit unterschiedlichen Farbstoffkombinationen – optional können Assays mit Genen von Interesse (GOI-Assays) auf 5-plex-Kapazität erweitert werden
- Präzise Bewertung der Genomintegrität von bis zu 5 Targets gleichzeitig durch unsere fortschrittliche QIAcuity-Softwarefunktion
Quantifizierung verbleibender Wirtszell-DNA
Verbleibende Wirtszell-DNA (Residual Host Cell DNA, HCD) wird während des Herstellungsprozesses von biopharmazeutischen Produkten verschleppt. Die zulässigen Mengen wurden von Regulierungsbehörden wie der U.S. Food and Drug Administration und der Weltgesundheitsorganisation festgelegt. Kits zur digitalen Quantifizierung von Rest-DNA eignen sich ideal für die hochpräzise Quantifizierung von HCD in komplexen Bioprozessen. Zu den Wirtszellen, die häufig bei der Entwicklung von Gentherapien, therapeutischen Proteinen und anderen Biotherapeutika verwendet werden, gehören Human Embryonic Kidney 293 (HEK293), Chinese Hamster Ovary (CHO) und E. coli.
Vorteile der Verwendung von Nanoplatten-dPCR für die Quantifizierung verbleibender Wirtszell-DNA
- Einfacher Aufbau und Nachweis von Wirtszell-DNA dank eines vorgemischten Master-Mix und einer positiven/internen Kontrolle
- Präziser Nachweis von verbleibender E. coli-, CHO- und HEK293-DNA bis in den niedrigen Femtogramm-Bereich, selbst in Anwesenheit von PCR-Kontaminationen und -Inhibitoren
- Speziesspezifische Multicopy-Target-Assays gewährleisten Ergebnisse, die nicht durch den Fragmentierungsgrad der resDNA beeinflusst werden
- Validierung der Quantifizierungsgenauigkeit oder Überbrückungsstudien unter Verwendung der dPCR-verifizierten Standards sind möglich
Nachweis von Mykoplasmen
Mykoplasmen sind Kontaminationen von biologischen Produkten, die sich aus Zelllinien in der biopharmazeutischen Industrie gewonnen werden. Mykoplasmen können in Zellkulturen als Folge einer Kontamination der Ausgangszelllinien selbst (Zellsubstrate) oder durch zufällige Verschleppung von Mykoplasmen während der Produktion auftreten. Es sind mehrere Leitlinien zum Kontaminationsrisiko und technische Veröffentlichungen zur Mykoplasmensicherheit bei der Herstellung biologischer Produkte verfügbar.
Die digitale PCR kann zum Nachweis von Kontaminationen in Zellkulturen und anderen aus Zellkulturen gewonnenen biologischen Produkten verwendet werden. So ist zum Beispiel das QIAcuity Mycoplasma Quant Kit ein RT-dPCR-Kit, das rRNA und DNA nachweist, was eine hohe Sensitivität der Methode ermöglicht. Eine interne Amplifikationskontrolle verhindert falsch negative Ergebnisse aufgrund von PCR-Inhibitoren, unsachgemäßer RNA-Extraktion oder unsachgemäßer RT-Reaktion. Mit dem sondenbasierten Assay können 127 verschiedene Mykoplasmenarten quantifiziert und nachgewiesen werden.
Vorteile der Verwendung von Nanoplatten-dPCR für den Nachweis von Mykoplasmen
- Konform: Der NAT(Nucleic Acid Technique)-Workflow zur Untersuchung von Mykoplasmen ist konform mit dem Europäischen, US-amerikanischen und Japanischen Arzneibuch
- Schnell: Keine zeitaufwendige Kultivierung von Mykoplasmen erforderlich
- Sensitiv: Der Nachweis von rRNA ermöglicht eine höhere Sensitivität als die Verwendung nur von DNA, weil in einer einzigen Bakterienzelle mehrere Kopien vorhanden sind (Nachweis von < 10 CFU/ml). Mit dem Assay lässt sich immer noch DNA nachweisen, wenn der RT-Schritt ausgelassen wird, was ein hohes Maß an Flexibilität schafft.
- Vorvalidiert: Der Workflow wurde im Rahmen eines umfassenden Validierungsberichts intensiv getestet, was Ihren Validierungsaufwand reduzieren kann.
- Zehn Mykoplasma-Standard-CFU-Kits zur internen Validierung oder als Positivkontrolle ohne Eintrag lebender Mykoplasmen
Genexpressionsanalyse
Beim Genexpressions-Profiling werden gleichzeitig die Expressionsniveaus mehrerer Gene für zwei oder mehr Proben verglichen. Diese Analyse kann Wissenschaftlern helfen, die molekulare Grundlage phänotypischer Unterschiede zu ermitteln und Zielgene für tiefergehende Studien auszuwählen. Genexpressions-Profiling liefert wertvolle Erkenntnisse über die Rolle der differenziellen Genexpression in normalen biologischen Zuständen und bei Erkrankungen.
Vorteile der Nanoplatten-dPCR für die Genexpression-Quantifizierung
- Weisen Sie geringfügige Veränderungen nach, insbesondere bei geringen Mengen an Templates
- Validierte Ergebnisse mit einer absoluten Konzentration und Häufigkeit von unter 1 % je nach Eingabemenge
- Erreichen Sie mit Nanoplate 26K eine höhere Genauigkeit und einen breiten dynamischen log5-Bereich oder führen Sie auf einer Nanoplate 8.5K kostengünstige Analysen mit 12-µl-Reaktionen und Hochdurchsatz-Optionen für „ähnlich“ exprimierte Targets (bis zu ca. 4-fache Änderung der Expression) durch
miRNA-Expressionsanalyse
Beim MicroRNA(miRNA)-Expressionsprofiling werden gleichzeitig die Expressionsniveaus mehrerer oder einzelner miRNAs zwischen zwei oder mehr Proben verglichen. Diese Analyse kann Forschenden helfen, miRNA als Biomarker bei Erkrankungen wie Krebs zu identifizieren und zu quantifizieren. Sie liefert wertvolle Erkenntnisse über die Rolle der miRNA-Expression in normalen biologischen Zuständen und bei Krankheiten.
Vorteile der Nanoplatten-dPCR für die miRNA-Expressionsanalyse
- Erkennung einzelner Nukleotidunterschiede in eng sequenzverwandten miRNAs dank der hohen Spezifität der dPCR
- Absolute Quantifizierung subtiler miRNA-Expressionsveränderungen, insbesondere bei geringen Template-Mengen
Lebensmittelprüfungen
Digitale Multiplex-PCR-Assays haben in der Lebensmittelindustrie ein breites Anwendungsspektrum, darunter behördliche Kontrollen, Qualitätssicherung, GVO-Tests, Aufdeckung von Lebensmittelbetrug und Überwachung lebensmittelbedingter Krankheiten. Mithilfe dieser Assays können Tierarten identifiziert und die Herkunft von Fleischprodukten zurückverfolgt werden. So kann zum Beispiel in einer einzigen Reaktion zwischen Schwein, Kamel, Schaf, Esel, Ziege, Kuh und Huhn unterschieden werden. Sie werden außerdem bei GVO-Tests zur Quantifizierung von Transgenen verwendet, wobei Studien eine höhere Sensitivität und Wiederholbarkeit im Vergleich zur qPCR gezeigt haben. Zur Aufdeckung von Lebensmittelbetrug können dPCR-Assays tierische Bestandteile in vegetarischen oder veganen Produkten identifizieren, indem sie auf spezifische mitochondriale und chloroplastische DNA-Marker abzielen. Zur Gewährleistung der Sicherheit und Qualität von Lebensmitteln lassen sich darüber hinaus mit der dPCR gleichzeitig mehrere mikrobielle Krankheitserreger wie E. coli, L. monocytogenes, S. aureus und S. enterica nachweisen.
Vorteile der Verwendung von Nanoplatten-dPCR für die Lebensmittelprüfung
- Ideal für Proben mit komplexer Matrix dank Multiplexing und der Möglichkeit, mithilfe der dPCR den Einfluss von Amplifikationseffizienzen aufgrund von Matrixunterschieden zwischen Referenzmaterialien und Proben zu minimieren
- Hoher Durchsatz dank Multiplexing von bis zu fünf Kanälen und einem 8-Platten-System
- Zuverlässiger Nachweis seltener GMO-Ereignisse durch reduzierten Hintergrund dank Partitionierung
Einzelzellanalyse
Im Vergleich zu den herkömmlichen Methoden zur Analyse der Gesamtheit von Zellpopulationen können mit der Einzelzellanalyse Daten auf Ebene einzelner Zellen gewonnen werden, was den Forschenden hilft, zelluläre Heterogenität, biologische Funktionen, Prozesse und Krankheitsmechanismen besser zu verstehen. Häufig genutzte Methoden der Einzelzellanalyse wie PCR, qPCR oder Next-Generation Sequencing (NGS) sind jedoch nicht immer sensitiv genug, um das interessierende Ziel nachzuweisen.
Die digitale PCR ist eine vielversprechende Option für die Einzelzellanalyse, da die kosteneffizienten, intuitiven und präzisen dPCR-Plattformen einen hohen Durchsatz, eine hohe Nachweissensitivität und Präzision bieten.
Vorteile der Verwendung von Nanoplatten-dPCR für die Einzelzellanalyse
- Hochpräzise dank physischer Partitionierung, die stabiler ist als Droplets
- Der sondenbasierte Nachweis ermöglicht das Multiplexing von bis zu fünf Targets in einer einzigen dPCR-Reaktion bei minimaler Optimierung
- Präzise Ergebnisse erlauben die Analyse von in geringen Mengen vorliegenden Targets und von Multi-Copy-Targets auf Einzelzellebene.
Nachweis von Genomediting (CRISPR-Cas9)
Nukleasen wie Zinkfinger (ZFN), Transcription activator-like effector (TALEN) und Clustered regularly interspaced short palindromic repeat (CRISPR) werden zum Editing des Genoms jeder Zelle verwendet. Diese Nukleasen produzieren stellenspezifische DNA-Doppelstrangbrüche (DSBs), welche dann durch die unpräzisen, fehleranfälligen Stoffwechselwege des Non-homologous end joining (NHEJ) (Spender-Template/präzise Punktmutation) oder der Homology-directed repair (HDR) (Deletion/Indels/Insertionen) repariert werden können, was eine gezielte Mutagenese zur Folge hat. Dadurch entsteht eine gemischte Population von Zellen mit heterogenen Indel-Fehlern und unterschiedlichen Allel-Editing-Frequenzen. Im Anschluss werden die Häufigkeiten des Genomeditings am gewünschten Locus gemessen. Klonale Zelllinien isolieren Einzelzellen, welche dann untersucht werden, um das Genomediting-Ereignis zu verifizieren.
Vorteile der Verwendung von Nanoplatten-dPCR für den Nachweis von Genomediting (CRISPR-Cas9)
- Höhere Sensitivität ermöglicht den Nachweis von Editing-Ereignissen mit Häufigkeiten von nur 0,5 %
- Absolute Quantifizierung von Editing-Ereignissen ab nur 5 ng Gesamt-gDNA
- Fähigkeit, in klonalen Populationen zwischen homozygoten und heterozygoten Edits zu unterscheiden
Quantifizierung von NGS-Bibliotheken
Die Quantifizierung von Bibliotheken für das Next Generation Sequencing ist ein wesentlicher Schritt, um Ihre Flusszellen mit voller Leistung zu nutzen. Es ist nachgewiesen, dass Über- oder Unterbeladung mit einer NGS-Bibliothek bedingt durch ungenaue Bibliotheksquantifizierung die erhaltene Datenmenge und -qualität beeinträchtigen. Die Verwendung der digitalen PCR zur Bestimmung der absoluten Konzentration eines NGS-Bibliothekspools kann von großem Vorteil sein, um eine optimale Ausbeute zu erzielen und die Kosten pro Probe zu senken.
Vorteile der digitalen Nanoplatten-PCR zur Quantifizierung von NGS-Bibliotheken
- Absolute Quantifizierung von amplifizierbaren Bibliotheksfragmenten ohne Amplifikationsverzerrung und ohne Standardverzerrung mit Ergebnissen in 2 Stunden, geeignet für Routinetests
- Hohe Reproduzierbarkeit und überlegene Uniformität beim Bibliothekspooling, mit Abdeckung aller Illumina Bibliothekstypen mit einem Assay
Quantifizierung und Interaktion von Proteinen
Die Actome Protein Interaction Coupling(PICO)-Technologie nutzt die Vorteile des QIAcuity Digital PCR-Systems und ermöglicht einen äußerst vielseitigen und sensitiven Ansatz zum Nachweis und zur Quantifizierung einzelner Proteine und Proteininteraktionen. Die PICO-Technologie übersetzt den komplexen Proteinstatus in DNA-Barcodes, die mithilfe von dPCR amplifiziert und nachgewiesen werden können. Dies kann insbesondere bei der Untersuchung zellulärer Stoffwechselwege, der Suche nach Protein-Biomarkern, der Entwicklung neuartiger Assays für die pharmazeutische Forschung oder der Durchführung von Multiomics-Analysen von Vorteil sein.
Vorteile der Verwendung von Nanoplatten-dPCR für den Proteinnachweis
- Die einzige Technologie auf dem Markt für die Quantifizierung von Proteinen mittels dPCR
- Für den Nachweis von Proteinen, Protein-Protein-Interaktionen und posttranslationalen Modifikationen auf Einzelzellebene